Cell Signaling Technology

“酶”处理染色质免疫沉淀(磁珠式)操作方法

酶”处理染色质免疫沉淀(磁珠式)操作方法

所需试剂

包含在试剂盒 SimpleChIP™ Enzymatic Chromatin IP Kit (Magnetic Beads) #9003:中的试剂:

a.    甘氨酸溶液 (10X)#7005

b.    缓冲液 A (4X) #7006

c.    缓冲液 B (4X) #7007

d.    ChIP缓冲液 (10X) #7008

e.    ChIP 洗脱(缓冲)液 (2X) #7009

f.     5 M NaCl#7010

g.    0.5 M EDTA#7011

h.    ChIP级蛋白G磁珠 #9006

i.     DNA结合缓冲液#10007

j.     DNA漂洗缓冲液(使用前添加4倍体积无水乙醇)#10008

k.    DNA洗脱缓冲液#10009

l.     DNA纯化柱#10010 36 个

m.  蛋白酶抑制剂混合物 PIC(200X) #7012

n.    RNase A (10 mg/ml) #7013

o.    微球菌核酸酶 (2000 gel units/μl) #10011(用来切割染色质的关键酶)

p.    蛋白酶K (20 mg/ml)#10012

q.    SimpleChIP™ 人 RPL30 外显子3引物#7014

r.     SimpleChIP™ 人 RPL30 内含子2引物#7015

s.     组蛋白H3 (D2B12) XP™ 兔单抗 (ChIP 专用) #4620

t.     正常兔IgG #2729

u.    #7016,DTT粉末,192.8mg,(4°C保存,溶解后-20°C保存)

 

不包含在试剂盒SimpleChIP™ Enzymatic Chromatin IP Kit (Magnetic Beads) #9003中的试剂:

a.    六孔磁性分离架 #7017/十二孔磁性分离架#14654

b.    甲醛(37%)(福尔马林)

c.    乙醇(96-100%)

d.    1X PBS #9872

e.    无核酸酶的水 #12931

f.     Taq DNA聚合酶

g.    dNTP 混合液

 

I.        细胞交联和样品制备

了获得最优的ChIP结果,一个标准的ChIP反应需要约4X 106个细胞处理后获得的染色质,以Hela细胞为例, 15cm培养皿,90%生长密度下的细胞量约为8X 106个细胞。在实际工作当中,我们建议每次实验处理足量的细胞用于满足后续多个免疫沉淀反应(如使用不同靶标蛋白抗体进行免疫沉淀,阴性对照(IgG)组,阳性对照组等)和技术性重复要求。您可根据自己的实验设计,在开始实验前计算所需要的ChIP反应次数,培养相应足量的细胞。例如,对于一个标准体系的单次ChIP实验(包括1个实验组样品和1个对照组样品,分别进行1个目的蛋白抗体,阴性对照IgG,阳性对照H3抗体的3个ChIP反应)。因此,以Hela细胞样品为例,如下表所示:

 

对照组                 

实验组

目的蛋白抗体

4X 106个细胞

4X 106个细胞

阴性对照IgG

4X 106个细胞

4X 106个细胞

阳性对照H3

4X 106个细胞

4X 106个细胞

所需细胞数

1.2X 107个细胞

1.2X 107个细胞

注意:建议在开展正式实验前,先进行下预实验,以熟悉实验体系和了解并优化所用样本的各项条件。预实验时,需要额外准备一个细胞样品,对染色质样品酶解效率和浓度进行检测(参照第III部分)。

另外,为了细胞计数,可另外准备一盘细胞用于血球计数板法测定细胞数。

 

实验前准备

o   足量培养的细胞(请根据自己的实验需求,计算所需要的ChIP反应次数和培养细胞量)

o   取出并预热200X蛋白酶抑制剂混合物PIC#7012和10X 甘氨酸溶液#7005,确保PIC完全溶解。

o   配制1M DTT溶液。具体地,192.8 mg DTT #7016+ 1.12ml dH2O,确保DTT完全溶解。

注意:一旦配好DTT溶液,请保存于-20°C。

o   准备预冷的PBS,用于洗涤细胞。

o   配制含PIC的PBS,用于刮下和收集细胞。每15 cm培养皿需要2ml PBS(加入10 μl 200X PIC) ,置于冰上冷却。

1.         为了使蛋白与DNA交联,向每个含有20 ml培养基的15cm培养皿中加入540 µl 37%的甲醛溶液(可根据培养基体积调整,保证甲醛终浓度为1%即可)。稍加转动培养皿使之混匀,室温放置10分钟。加入甲醛后,培养基的颜色会发生改变。

2.         每15 cm培养皿中加入2 ml 10X 甘氨酸溶液稍加转动使之混匀,室温孵育5分钟,来终止上述固定反应。加入甘氨酸后,培养基的颜色会发生改变。

3.         对于悬浮细胞,收集固定后的细胞到50 ml锥底管中,4°C 1500rpm离心5分钟沉淀细胞后,用冰冷的PBS漂洗两次(20 ml /次)。去除上清后立即进行后续的细胞核处理和染色质酶解(见第II部分)。

4.         对于贴壁细胞,弃去培养基后用冰冷的普通PBS漂洗两次(20 ml /次),每次彻底弃净PBS。

5.         每15 cm培养皿的细胞量中加入2 ml冰冷的含PIC的1X PBS,将细胞刮下,并将所有固定后的细胞收集到一个15 ml的锥底管中。

6.         4°C,1500rpm离心5分钟收集细胞,去除上清后立即进行后续的细胞核处理和染色质剪切(参照第II部分)。

 

II.       细胞核处理和染色质剪切

注意:以下的操作流程所需的试剂用量是针对单个IP反应(4X 106细胞)给出所需试剂用量。我们建议,同一样品组内的多管样品(用于不同抗体的ChIP沉淀反应需要)染色质处理过程可合并至一管进行,这有利于得到均一的染色质酶解和超声效果,使用者需根据每组需要的ChIP反应总数调整试剂用量。

实验开始前准备:

o   取出并预热200X蛋白酶抑制剂混合物PIC#7012,确保PIC完全溶解。

o   1 M DTT(192.8 mg DTT #7016 + 1.12ml dH2O),确保DTT完全溶解(溶解后-20°C 保存)。

o   预热10X ChIP缓冲液#7008,确保其中SDS完全溶解。

针对单个IP反应,准备如下试剂:

o   每4X 106细胞,准备100 µl 1X ChIP 缓冲液 (10 µl 10X ChIP 缓冲液#7008 + 90 µl 水) + 0.5 µl 200X 蛋白酶抑制剂混合物 (PIC),冰上预冷。

o   每4X 106细胞,准备1 ml 1X 缓冲液A(250 µl 4X缓冲液A #7006+ 750µl 水)+ 0.5 µl 1 M DTT + 5 µl 200X蛋白酶抑制剂混合物(PIC),冰上预冷。

o   每4X 106细胞,准备1.1 ml 1X 缓冲液B(275 µl 4X缓冲液B#7007 + 825µl 水)+ 0.55 µl 1 M DTT,冰上预冷。缓冲液B中切勿加入PIC。

1.         每4X 106细胞重悬到预冷的1 ml 1X缓冲液 A + DTT + PIC中,冰上孵育10分钟,每3分钟颠倒混匀一次。

2.         4°C 3000rpm离心5分钟以沉淀细胞核。弃上清,每4X 106细胞沉淀重悬在1 ml冰冷的缓冲液B + DTT中。再次离心,弃上清,并将沉淀用100 µl 缓冲液 B + DTT再次重悬(此时同一样品组内的多管样品可合并至一管一起进行后续的酶解,超声处理,将同组样品转移到一个新的1.5 ml离心管中)

3.         加入适量(一般起始量为0.5ul/每4X 106细胞)微球菌核酸酶,颠倒混匀数次,37°C孵育20 min,每隔3~5分钟颠倒混匀一次,将DNA消化成长度约为150-900 bp的片段。

注意:可通过预实验确定将不同细胞系DNA酶切到理想长度所需微球菌核酸酶的酶量(参照附录A),其中4 ×106个HeLa细胞核经0.5 µl微球菌核酸酶#10011消化可以得到合适长度的DNA片段。

4.         每4X 106细胞,加入10 µl 0.5 M EDTA终止消化,将离心管置于冰上。

5.         4°C 13000rpm离心1分钟,沉淀细胞核。弃上清。

6.         每4X 106细胞的细胞核沉淀重悬在100 µl 1X ChIP 缓冲液 + PIC中,冰上孵育10分钟。 可用带有剪去前端部分的枪头的移液器吹打均匀。

7.         对细胞核样品用超声波处理数次以破碎核膜(将合并后的同组样品超声体积控制在500 µl左右,若原体积不足500ul,可用1X ChIP 缓冲液补足到500ul,可获得最优的超声效果)。CST推荐使用最大功率为100W左右的超声破碎仪

进行超声处理,使用3mm的探头,设置超声功率为最大功率的30%-40%,对细胞核进行每次20秒,共3次(累计60秒超声)的超声处理以达到完全破碎的效果。每次超声处理间隔30秒并置于冰上以防止超声引起样品过热。另外,可以在超声前后分别把细胞核悬液滴于载玻片上,用盖玻片封片后利用光学显微镜观察细胞核以判断完全破碎细胞核所需的最佳条件。或者也可以用杜恩斯型(Dounce)匀浆器处理细胞核20次,但是这种破碎效果可能不如超声处理完全。

8.         4°C 10000rpm离心10分钟,除去样品中的细胞核碎片。

9.         将上清转移到一个新管子中,即为交联的染色质样品。在下一步使用之前需要保存在-80°C。取50 µl染色质样品用以分析DNA的酶切情况并确定其浓度(参照第III部分)。

 

III.      分析染色质的浓度和酶切情况(推荐步骤)

1.         向50 µl染色质样品(来自第I部分第9步)添加100 µl无核酸酶的水,补足到150ul,然后加入6 μl 5 M NaCl #7010和 2 μl RNase A #7013。涡旋震荡混匀,37°C孵育30分钟。

2.         向RNase A消化后的样品中加入2 μl 蛋白酶K。涡旋震荡混匀, 65°C孵育2小时。

3.         按照第VI部分的说明利用离心柱纯化DNA。

4.         DNA样品纯化后,取15 µl进行1%琼脂糖凝胶电泳(使用100 bp DNA ladder作为Marker)以确定DNA片段大小。DNA应当被酶切成长度约为150-900 bp的片段(1~5个核小体长度)

5.         测定DNA浓度时,将2 µl纯化后的DNA加入到98 µl TE缓冲液中(即稀释50倍),然后读取并记录DNA浓度。并乘以50来计算原管中的DNA浓度,理想的DNA浓度应当在50~200 μg/ml之间。

注意:要得到理想的ChIP结果,合适长度和浓度的染色质样品至关重要。过度消化可能会减弱PCR定量信号。而消化不足可能会导致过高的背景信号并降低分辨率。加入到IP体系中的染色质太少也可能导致不能产生PCR定量信号。优化染色质消化条件的操作方法请参照附录A。

 

IV.    染色质免疫沉淀

为了得到理想的ChIP结果,每个IP反应需要含有5-10 µg DNA的交联染色质片段。一般在与抗体孵育前,需要根据样品染色质浓度计算体积后分至新的不同EP管中,并分别用1X ChIP缓冲液补齐到500 µl。

实验开始之前准备:

o   取出并预热200X蛋白酶抑制剂混合物PIC#7012。确保PIC完全溶解。

o   预热10X ChIP缓冲液#7008,确保其中SDS完全溶解。

o   交联的染色质样品(取自第II部分第9步)

o   低盐漂洗液:每个IP反应预备 3 ml 1X ChIP 缓冲液 (300 µl 10X ChIP 缓冲液 + 2.7 ml 水),使用前室温保存。

o   高盐漂洗液:每个IP反应预备1 ml 1X ChIP 缓冲液 (100 µl 10X ChIP 缓冲液 + 900 µl 水) + 70 µl 5M NaCl #7010,使用前室温保存。

1.         在确定免疫反应数时,每一个组内应考虑计算包括目的蛋白抗体管(可能为多种不同目的蛋白抗体,根据抗体种类数确定)和阴性对照管抗体正常兔IgG #2729的反应数。同时,对于初次进行ChIP实验的用户,我们推荐每组加一个阳性对照管,后续使用试剂盒内提供的#4620抗体进行ChIP反应。

2.         在配好的ChIP缓冲液中,每个反应管加入等量交联后的染色质样品(每管对应5~10ug的染色质DNA,来自第II部分第9步),每个沉淀反应需要用1X ChIP缓冲液补齐到500 µl(需要补加的体积根据每管分装的染色质体积确定),并补加适量的200X PIC,混匀后置于冰上。

3.         将稀释后的ChIP染色质,每个样品管吸取10 µl样品并转移到一个新的离心管中,作为2%样品输入对照(Input),在后续使用之前可以保存在-20°C (Input样品后续用于第V部分的第1步)。

4.         在各个样品管中加入对应的目的蛋白抗体,在每组阴性对照管中加入IgG。每种抗体做免疫沉淀时所需用量在1~2 µg,具体浓度请联系CST技术支持查询,并需要和阴性对照正常兔IgG #2729抗体用量保持一致。IgG浓度较高,加入1~2ul即可。对于本试剂盒自带阳性对照组蛋白H3 (D2B12) XP™ 兔单抗#4620,加入10 µl即可。将加入抗体的反应管封严,在4°C的转子上孵育4小时以上或过夜。

5.         轻微重悬混匀ChIP级的蛋白G磁珠 #9006,取30 μl加入到每个免疫沉淀反应中,重新封严管子,4°C的转子上孵育2小时。为了防止在吸取微珠时枪头将微珠损伤,可以在吸取微珠前将100ul枪头用剪刀减去前端一小部分使用。

6.         将离心管放在磁性分离架上,将蛋白G磁珠吸附至管壁。等1~2分钟溶液澄清后,小心地将上清吸走。此上清可以暂时保留,以备查找问题时使用。

7.         加入1ml低盐漂洗液,并将样品管从磁性分离架取下,在4°C转子上转动并孵育5分钟。再重复上述6和7步骤2次,即总共用低盐漂洗液洗3次。

8.         加入1ml高盐漂洗液,并将样品管从磁性分离架取下,在4°C转子上转动并孵育5分钟。然后重新至于磁性分离架,等1~2分钟溶液澄清后,小心地将上清吸走,然后立即进入第V部分。

 

V.     将染色体从抗体/蛋白G微珠上洗脱并解交联

实验开始之前准备:

o   从冰箱中取出并在37°C水浴中预热2 X ChIP洗脱缓冲液#7009并确认SDS已完全溶解。

o   将水浴锅或温控混匀器设定到65°C。

o   为各个样品管(包括阴性对照IgG管)洗脱下来的样品和2%的样品输入对照(2% Input)准备1 X ChIP洗脱缓冲液。每管需要75 µl 2 X ChIP洗脱缓冲液#7009 + 75 µl 水,需要的1 X ChIP洗脱缓冲液总量依据总管数+input数来计算。

以下步骤均针对每个样品管来描述:

1.         取150 µl 1 X ChIP洗脱缓冲液分别加入到每组对应的2%样品输入对照(2% Input)管中,室温放置直到V部分第6步。

2.         在其他每份ChIP免疫沉淀样品中分别加入150 μl 1 X ChIP 洗脱缓冲液。

3.         用涡旋混合器轻轻震荡(1200rpm),65°C孵育30分钟将染色质从抗体/蛋白G微球上洗脱下来。此步用金属温控振荡器(即带有振荡功能的金属浴)效果最好。当然,洗脱也可以在室温下的转子上进行,但洗脱效果可能不如温控振荡器完全。

4.         将离心管放在磁性分离架上吸附蛋白G磁珠,等1~2分钟使溶液澄清。

5.         小心地将每个样品管中洗脱下来的染色质上清转移到一个新的离心管中,并分别标记。

6.         在所有管中,包括第一步的2%样品输入对照(2% Input)管,都加入6 µl 5 M NaCl和2 µl 蛋白酶K#10012并在65°C孵育2小时。

7.         可直接进入第VI部分,或者可保存样品在-20°C,暂停操作。为了避免在低温形成沉淀,在第VI部分第一步开始添加DNA结合液前,需确保样品回复室温。

 

VI.    离心柱纯化DNA

实验开始之前准备:

o   向DNA漂洗缓冲液#10008添加4倍体积的96-100%乙醇。

o   为V部分得到的每一个DNA样品准备一套DNA离心柱和收集管。

1.         向每个DNA样品中添加750 µl DNA结合缓冲液#10007,涡旋混匀器稍加震荡。即每一份的样品需要添加五倍体积的DNA结合缓冲液。

2.         将DNA离心柱插入到收集管中并做标记,每个样品先吸取450 µl分别转移到各自的离心柱中。

3.         室温14000rpm离心30秒。

4.         把离心柱从收集管中取出,倒掉废液后,将离心柱重新插回到收集管中。

5.         将第1步中剩余的450 µl样品再转移到相应的离心柱中,重复第3和第4步。

6.         在每个离心柱中加入750 µl的DNA漂洗缓冲液#10008。

7.         14000rpm离心30秒。

8.         把离心柱从收集管中取出,倒掉废液。将离心柱插回到收集管中。

9.         14000rpm离心30秒。

10.       取出每个样品对应的离心柱,分别插入到一个干净的1.5 ml离心管中,并做好标记,将收集管和废液一起丢弃。

11.       在每个离心柱中加入50 µl DNA 洗脱缓冲液#10009,室温静置2分钟。

12.       14000rpm离心30秒,洗脱DNA。

13.       将每个管子中的DNA离心柱取出并丢弃,离心管中的洗脱液即为纯化的DNA。样品可立即使用或保存在-20°C。

 

VII.   用PCR定量进行ChIP富集效率的分析

建议:

o   实验中使用带滤芯的枪头以尽可能减少污染的可能性。

o   试剂盒中所包含的对照引物特异性识别人或小鼠的RPL30基因(#7014 + #7015),既可以用于常规PCR也可以用于实时定量PCR。如果用户做的ChIP样品来源于其它他物种,建议客户设计合适的特异对照引物并优化PCR反应条件。

o   建议使用热启动Taq聚合酶以减少产生非特异PCR产物的风险。

o   PCR引物的选择很关键。引物应尽可能按照下列标准来设计:

引物长度:

24个核苷酸

最佳Tm值:

60°C

最佳GC含量:

50%

扩增片段长度:

150-200 bp(用于常规PCR) 80-160 bp (用于实时定量PCR)

 

常规PCR操作:

1.         按样品数取出合适数目的0.2 ml PCR管并做好标记。注意包括2%样品输入对照(Input)组,阳性对照(组蛋白H3样品)组,阴性对照(正常兔IgG样品)组,以及一个监控DNA污染的无DNA模板的空白组对照。

2.         在每管中加入2μl各自对应的DNA样品作为模板,即Input组需要加入稀释后的input DNA样品作为模板,而其他反应管需要按照实验设计的分组加入对应的ChIP沉淀后获得的DNA作为模板。

3.         按下面配方配制PCR反应液总管,记住计算时多算两份以补偿分管时的体积损失。配好后,向每个PCR管中加入18μl反应液混合物。

试剂 每个PCR反应(18 μl)所需体积
无核酸酶的水 12.5 μl
10X PCR 缓冲液 2.0 μl
4 mM dNTP混合液 1.0 μl
5 μM RPL30引物 2.0 μl
Taq DNA聚合酶 0.5 μl

4.         设定并执行以下PCR反应程序:

a. 预变性 95°C 5 分钟
b. 变性 95°C 30 秒
c. 退火 62°C 30 秒
d. 延伸 72°C 30 秒
e. 重复b~d步,共34个循环    
f. 终末眼神 72°C 5 分钟

5.         从每个反应管中取10 μl PCR产物,2%琼脂糖凝胶或10%聚丙烯酰胺凝胶进行电泳,用100 bp DNA Marker做对照。人、小鼠RPL30的PCR产物大小分别为161和159 bp。

实时定量PCR方法:

1.         选与所用定量PCR仪配套的PCR管或板,做好标记。注意加入阳性对照组蛋白H3样品组,阴性对照正常兔IgG样品组,以及监控DNA污染的不加DNA模板的空白组对照。另外在加入反应体系前,将2%样品输入对照(input)DNA做一系列稀释(无稀释,1:5稀释,1:25稀释,1:125稀释),据此可以产生标准曲线并测算PCR扩增效率。

2.         在每个反应管或孔(板上)中均加入2 μl相应DNA模板。即Input组需要加入不同稀释后的input DNA样品作为模板,而其他反应管需要按照实验设计的分组加入对应的ChIP沉淀后获得的DNA作为模板。

3.         按下面配方配制PCR反应液总管,记住计算时多算两份以补偿分管时的体积损失。配好后,向每个PCR管中加入18 μl反应液混合物。

试剂 每个PCR反应(18 μl)所需体积
无核酸酶的水 6 μl
5 μM RPL30 引物 2 μl
SYBR-Green反应体系 10 μl

4.         按下面程序执行PCR:

a. 预变性 95°C 3 分钟
b. 变性 95°C 10 秒
c. 退火及延伸 60°C 30 秒
d. 重复第2及第3步,共40个循环  

5.         用定量PCR仪自带的程序分析定量结果。并利用下列公式,根据每管Ct值进行ChIP富集效率的计算。

Enrichment percentage=2%×2(C[T] Input Sample – C[T] IP Sample

C[T] = CT = Threshold cycle of PCR reaction

 

附录A:染色质消化条件的优化

将交联后的DNA消化成长度为150-900 bp片段所需最优条件取决于细胞类型、密度和微球菌核酸酶的浓度。以下操作步骤可以用于优化既定细胞类型和密度的消化条件。

1.         先用2 X 107细胞(约5个IP反应所需细胞数)制备交联的细胞核,按照A部分第1到6步操作。

2.         将上述第6步得到的500 μl核提取物分装到5个不同的微量离心管中,每管100ul,置于冰上。

3.         把5 μl微球菌核酸酶加入到20 μl 1 X 缓冲液 B + DTT中(1:5稀释)。

4.         向第2步所得的5个微量离心管中分别加入0 μl,2.5 μl,5 μl,7.5 μl或10 μl稀释后的微球菌核酸酶,颠倒几次混匀,然后在37°C孵育20分钟,期间经常的颠倒混匀。

5.         在上述5管中分别加入20 μl 0.5 M EDTA终止消化,置于冰上。

6.         4°C 13000rpm离心1分钟,沉淀细胞核并去除上清。

7.         将细胞核沉淀用200 μl 1X ChIP 缓冲液 + PIC重悬,在冰上放置10分钟。

8.         用超声波处理样品数次以破碎细胞核膜。在每次超声处理之间,将样品置于冰浴内降温30秒,方法同II部分第7步。

9.         4°C 10000rpm离心10分钟,使样品澄清。

10.       各取50 μl超声裂解物的上清转移到新的离心管中。

11.       向每个50 μl样品中加入100μl无核酸酶的水,6 μl 5 M NaCl 和 2 μl RNAse A。涡旋震荡混匀, 37°C孵育30分钟。

12.       向RNAse A 消化后的样品中加入2 μl 蛋白酶K。震荡混匀后在65°C孵育2小时。

13.       取20 μl样品、1 kb DNA marker在1%琼脂糖胶内电泳,观察酶切后DNA片段的大小。

14.       从电泳带型上判断何种消化条件生成所需要的150-900 bp带型(1~5个核小体长度)。优化所得稀释的微球菌核酸酶体积即为下一步实验中用于4 X 106个细胞消化所用的微球菌核酸酶原液体积数。比如说,如果在本次实验中,用5 μl稀释后的微球菌核酸酶处理后得到150-900 bp带型,则在A部分的第7步则应加入1 μl微球菌核酸酶原液。

15.       假如结果显示所用条件未能达到理想的消化结果,则相应调整每组消化所用酶量,重做条件优化实验。

 

附录B:常见问题及解决方案

问题 可能的原因 改进建议
所得消化后的染色质样品浓度过低 用于消化的细胞太少或者消化后细胞核没有完全裂解 如果染色质样品DNA浓度接近于200 μg/ml,则增加染色质的加入体积使每个反应中的DNA含量达到20μg。
在交联之前,对备用盘细胞计数确定实际所用的准确细胞数,并在超声处理前后用显微镜观察,确保细胞核已完全裂解。
染色质消化不够并且所得片段过长(大于900 bp) 细胞被过度交联。交联处理时间超过10分钟可能会抑制染色质消化。 缩短交联处理的时间为10分钟。
消化时,细胞太多或微球菌核酸酶太少 在交联之前,对备用盘细胞计数确定实际所用的准确细胞数。可参考附录A在实验前优化消化条件。
染色质消化过度,片段太小(都是150bp左右,一个核小体长度的片段)。将染色质完全消化成单核小体长度的片段会导致PCR定量时信号消失,特别是当PCR扩增片段大于150 bp时。   消化时,细胞太少或微球菌核酸酶太多 在交联之前,对备用盘细胞计数确定实际所用的准确细胞数。可参考附录A在实验前优化消化条件。
样品输入对照组没有PCR产物或很少产物。 PCR反应所加DNA模板量不足或是PCR条件不合适 增加PCR反应中DNA模板量或扩增循环数  
PCR所扩增的区域可能跨过了无核小体区域(在酶切时被切断) 以交联并消化后的染色质为模板优化所用引物的PCR条件。设计一对新的引物,使扩增片段的长度少于150bp(参考G部分引物设计建议)。
加入到免疫沉淀体系中的染色质太少或者染色质被过度消化 参考问题1、3的改进建议。
阳性对照组蛋白H3抗体免疫沉淀组RPL30基因PCR扩增没有条带 加入到免疫沉淀体系中的染色质太少,或者抗体加的太少,或者免疫沉淀反应时间太短 用于每个IP的染色质至少需要20 μg,抗体不少于10 μl。抗体与染色质需要孵育过夜,加入蛋白G微球后再放两个小时。
染色质从蛋白G微球上洗脱不完全 最佳的洗脱条件是将样品放在65°C并经常混匀使微球悬浮在溶液中
阴性对照兔IgG免疫沉淀组和阳性对照组蛋白H3免疫沉淀组在PCR中得到相近量的产物 加入到免疫沉淀体系中的染色质或抗体太多 每个IP体系中加入的染色质不超过50 μg,抗体不多于10 μl。染色质或抗体太多会导致背景很高。
PCR体系中模板DNA过多或PCR循环数过多 减少PCR体系中模板量或降低循环数。在PCR反应对数增长期分析结果非常重要,否则初始模板量的差异不能被精确检测。
实验抗体免疫沉淀组没有PCR产物 PCR体系中DNA模板量不足。 增加PCR反应中DNA模板量或扩增循环数
免疫沉淀体系中加入的抗体量不足。 通常一个免疫沉淀反应需要的抗体量在1到10 μg之间。但是具体的用量因抗体而异。尝试增加免疫沉淀中的抗体量。
所用抗体不适合免疫沉淀 确认这种抗体在常规的免疫沉淀反应中有效。

 

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